价格:530
货号Tripure Reagent(Chloroform free)总RNA提取试剂(无氯仿)
产品详情
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产品信息
产品名称 |
产品编号 |
规格 |
价格(元) |
Tripure Reagent(Chloroform free)总RNA提取试剂(无氯仿) |
HRN0143 |
50mL |
530.00 |
Tripure Reagent(Chloroform free)总RNA提取试剂(无氯仿) |
HRN0144 |
100mL |
890.00 |
产品描述
Tripure Reagent(Chloroform free)是传统 Trizol 的免氯仿升级版,广泛适用于从各类动物组织、植物材料、培养细胞、细菌等样品中提取 Total RNA 和 Small RNA。与传统 Trizol 提取方法相比,本产品不需要使用氯仿进行分层,操作更简单,且全程可在常温进行。本产品提取的 RNA 基本不残留 DNA,提取的 RNA 可以直接用于 cDNA 克隆、qRT-PCR 检测、mRNA 纯化、体外翻译、Northern-blotting 杂交、高通量测序等各种分子生物学实验。
产品组分
试剂盒组成 |
保存 |
100 mL |
备注 |
TRIpure |
4℃避光 |
100 mL |
|
异丙醇 |
室温 |
50 mL |
自备 |
75%乙醇 |
室温 |
100 mL |
自备 |
RNase-free H2O |
室温 |
20 mL |
自备 |
本试剂盒在室温储存 12 个月不影响使用效果。
应用范围
适用于各种动植物组织/细胞总 RNA、DNA、蛋白的快速抽提
运输和保存方法
本产品可在室温下稳定保存1年。尽管如此,为达到最佳效果,我们强烈建议保存在2-8℃的环境下。
冰袋运输。2-8℃,避光保存,有效期1年。
注意事项
1.RNA最重要的指标就是没有降解完整性高,目前普通的分光光度计包括Nanodrop 是无法通过测量 OD260/280 和 OD260/230 来确认 RNA 是否降解的。判断 RNA 是否降解可以通过跑 1%琼脂糖电泳检测通过直接观察28S:18S 比值来判断是否降解,或者用采用安捷伦 Bioanalyzer2100 仪器检测,测定 RNA 产物的 RIN 值
2.本产品与传统 Trizol 一样属于通用型总 RNA 提取试剂,具有和 Trizol 类似的适用范围。绝大部分常规动物组织细胞(如:肝脏、肾脏、脑组织、培养细胞)、简单植物组织(如水稻、玉米、拟南芥、烟草、小麦等)都有良好效果。但是对于多糖多酚植物如棉花,某些难破壁的细菌等样品不适用。
3.本产品仅作科研用途!
使用方法(实验前请先阅读注意事项!)
提示:用 Tripure在抽提 RNA 时要戴手套和护眼罩。避免接触皮肤和衣服。在化学通风橱完成操作。避免呼吸道吸入。如无特殊说明,所有的操作应该在在 15~30°C 的室温条件下。
1. 样本处理
a.植物组织:取新鲜植物组织在液氮中充分研磨或将植物组织剪碎后直接在 Tripure 中迅速研磨,每25 - 50 mg组织加入0.5 ml Tripure,混匀。
b.动物组织:取新鲜或-70℃冻存动物组织尽量剪碎,每15-50 mg组织加入0.5 ml Tripure,匀浆仪进行匀浆处理。或在液氮中研磨后加入0.5 ml Tripure 混匀。
c.单层培养细胞:尽量去除干净残留培养液后直接往直径3.5 cm 的培养板中加入0.5ml Tripure 覆盖并反复吹打裂解细胞。依据培养板的面积而不是依据细胞的数量来决定所需的Tripure 量(每10 cm2加0.5 ml)。当Tripure 量不足时可导致抽提的RNA中污染有 DNA。
▲注意:贴壁培养细胞往往不能完全从培养瓶(皿)脱落,这并不意味着裂解不完全,此时细胞膜实际已经完全破裂开,并已释放出全部RNA,继续做即可。
d.细胞悬液: 离心收集细胞。 在 Tripure 试剂中用移液管反复吹打来裂解细胞。每1-5×106 的动物细胞,植物细胞或每5×106细菌加0.5 ml Tripure。在加入Tripure 前应避免洗涤细胞,因为那样会增加mRNA降解的可能性。破裂某些细菌可能需要使用匀浆器。
e.液体样本:每200 μl(低于200 μl时,可用RNase-free H2O补足)血浆、血清等液体样本,加入0.5ml Tripure 后振荡混匀 。
2. 向上述裂解液中加入 2/5 体积的 RNase-free H2O(每 500 μl Tripure 加 200μl 水),剧烈振荡混匀,室温静置 5 min。
▲当处理样本量较大50 mg 左右时,可延长室温静置时间到10 - 15 min。
3. 室温 12,000 rpm 离心 15 min。
4. 离心后溶液分成上层水相(含 RNA)和下层沉淀(含蛋白质、DNA、多糖等杂质),小心吸取上层水相至一个新的离心管中。
▲上层水相约占总体积的90%,如用500 μl Tripure 进行提取,上层水相约为630 μl,建议吸取500 μl;提取微量样本时,为减少RNA损失,可以全部转移上清。
▲当样本量较小时,离心后可能不会出现下层沉淀,属于正常现象,可继续按后续步骤完成提取。
5. 加入等体积异丙醇,颠倒混匀,室温静置 10 min。
6. 室温 12,000 rpm 离心 10 min。通常可以看见白色沉淀,小心弃去上清。
▲RNA沉淀在离心前通常不可见,离心后在管侧壁和管底形成薄片状沉淀(样品量少的情况下,RNA沉淀散在管侧壁和管底有可能看不到明显沉淀)。部分组织材料由于含有较多的代谢产物,导致沉淀不能聚集而分散在离心管壁上,此时,请沿液面缓慢吸取上清。
7. 加入 1 ml 75%乙醇(RNase-free ddH2O 配制)漂洗,涡旋震荡 15 sec,让沉淀悬浮起来,并上下颠倒数次。
8. 室温 12,000 rpm 离心 3 min,小心弃上清。
9. 重复步骤 7 和 8 漂洗一遍,小心弃尽上清。
▲为减少杂质残留,应尽可能的将上清弃干净。建议弃去大部分上清后,短暂点甩离心将残留液体甩至管底,用200 μl 吸头吸尽残留的液体,保留管底及管侧壁的白色RNA沉淀。
10. 室温晾干约 1 min,在加入适量的 RNase-free ddH2O 溶解沉淀,室温涡旋3 min(或使用移液器反复吹打管底和管壁的沉淀帮助溶解),使 RNA 沉淀充分溶解。提取的 RNA 产物可以分装后在- 85 ~ - 65°C 长期保存,在- 30 ~ - 15°C 仅可短期保存。
▲一般稍稍晾干RNA即可,过度干燥会导致RNA难于溶解。
▲注意:从某些样本提取RNA时,RNA沉淀并非完全聚集在离心管管底,而是也以均匀的薄雾状沉淀吸附在管侧壁上。请注意仔细观察,并用移液器吹打管底和沉淀所在的管侧壁充分溶解所有的RNA。