价格:680
货号植物基因组DNA快速提取试剂盒

产品详情
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产品信息:
产品名称 |
产品编号 |
规格 |
植物基因组DNA快速提取试剂盒 |
HRQ0541 |
50T |
HRQ0542 |
100T |
|
HRQ0543 |
200T |
产品简介:
该试剂盒采用DNA吸附柱和特殊的溶液系统,适用于适合从各种新鲜的植物组织中快速提取到高质量的基因组 DNA。在60分钟内完成一个或多个100mg新鲜或20mg干燥的植物样品DNA的纯化工作。提取过程不需要用到有毒的酚氯仿等有机物抽提,能快速高效地去除多糖类、酚类和酶抑制物等杂质,纯化的DNA可直接用于PCR、酶切和杂交等实验。
新鲜或干燥的植物样本经裂解液裂解;蛋白质、多糖、细胞残片被沉淀去除;然后基因组DNA在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜,再通过一系列快速的漂洗、离心的步骤, 进一步将多糖,多酚和细胞代谢物,蛋白等杂质去除,最后低盐的洗脱缓冲液将高纯度的基因组DNA从硅基质膜上洗脱。
通常情况下,每100mg新鲜组织组织可获得1-25μg的高纯度的基因组DNA(实际可能因样品的不同而导致DNA产量的不同)。
储存事项:
1)本试剂盒在室温储存 12 个月不影响使用效果。
2)试剂盒储存于低温(4℃或者-20℃)会造成溶液沉淀,影响使用效果,因此运输和储存均在室温下(15℃-25℃)进行。
3)避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、PH 值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。
产品特点:
1.不使用有毒的苯酚,氯仿等试剂.
2.简捷,单个样品操作一般可在60分钟内完成。
3.适应性比较广泛,可以提取包括拟南芥、小麦、松树、马铃薯、玉米、大豆、水稻、烟草、油菜、番茄等各类植物样本的DNA。
4.多次柱漂洗确保高纯度,OD260/OD280 典型的比值高达 1.7~1.9,长度可达30kb-50kb,
可直接用于PCR,Southern-blot 和各种酶切反应。
产品组分:
组分 |
存储 |
50T |
100T |
200T |
RNase A(10mg/mL) |
-20℃ |
350μL |
750μL |
1.5mL |
Buffer LP1 |
室温 |
25mL |
50mL |
100mL |
Buffer LP2 |
室温 |
10mL |
20mL |
40mL |
Buffer LP3 |
室温 |
21mL 第一次使用前请添加14mL无水乙醇 |
42mL 第一次使用前请添加28mL无水乙醇 |
84mL 第一次使用前请添加56mL无水乙醇 |
Buffer PW |
室温 |
15mL 第一次使用前请添加45mL无水乙醇 |
30mL 第一次使用前请添加90mL无水乙醇 |
60mL 第一次使用前请添加180mL无水乙醇 |
Buffer TE |
室温 |
15mL |
30mL |
60mL |
离心柱和收集管 |
室温 |
50套 |
100套 |
200套 |
使用前必读:
1、实验过程使用的离心机均可在室温进行(4℃也可以),转速可以达到12,000rpm的传统台式离心机。
2、样本应该避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。
3、Buffer LP1可能发黄,并不影响使用。
4、若Buffer LP1和LP2有沉淀析出,可在37℃水浴溶解,摇匀后使用。
使用方法:
提示:
→第一次使用前请先在在 Buffer LP3,Buffer PW中添加指定量的无水乙醇,并做好标记!
1、处理材料:
取植物新鲜组织100 mg或干重组织20 mg,加入液氮充分碾磨。加入400 μL Buffer LP1和6μL RNase A(10 mg/mL),旋涡振荡1 min,室温放置10 min。
2、加入130μL Buffer LP2,充分混匀,旋涡振荡1 min。12,000 rpm离心5 min,将上清移至新的离心管中。
3、加入上清液1.5倍体积的Buffer LP3(例如500μL的上清液加750μL的Buffer LP3)(使用前请先检查是否已加入无水乙醇!),立即充分振荡混匀15秒,此时可能会出现絮状沉淀。
4、将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱中(吸附柱放入收集管中),12,000 rpm离心30秒,倒掉废液,吸附柱放回收集管中。
5、向吸附柱中加入600μL漂洗液Buffer PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇!),12,000 rpm离心30秒,倒掉废液,将吸附柱放入收集管中。
6、重复步骤5。
7、将吸附柱放回收集管中,12,000 rpm离心2分钟,倒掉溶液,将吸附柱置于室温5分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液Buffer PW。
8、将吸附柱装入一个干净的离心管中,向吸附柱的中间部位悬空滴加50-200μL的洗脱缓冲液Buffer TE,室温放置2-5min,12,000rpm离心2分钟,将溶液收集到离心管中,获得DNA。
注意:为了增加DNA得率,可以将步骤8离心得到的溶液再次加入吸附柱中,室温放置2min,12,000rpm离心2分钟。洗脱液不应该少于50μL,体积过小影响回收效率。
DNA浓度及纯度检测
得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。
OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用ddH2O,比
值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
产品仅用于科研等非医疗用途!