价格:276
货号Fluo-4, AM, Cell Permeant 细胞膜可渗透钙离子荧光探针
产品详情
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产品信息
产品名称 |
产品编号 |
规格 |
Fluo-4, AM, Cell Permeant 细胞膜可渗透钙离子荧光探针 |
HRX1326 |
50 μg |
Fluo-4, AM, Cell Permeant 细胞膜可渗透钙离子荧光探针 |
HRX1327 |
5×50 μg |
Fluo-4, AM, Cell Permeant 细胞膜可渗透钙离子荧光探针 |
HRX1328 |
1 mg |
产品描述
细胞生物学实验中常使用Fluo-3, AM作为一种荧光探针来检测细胞内钙离子浓度变化。其检测原理基于Fluo-3,AM可穿透细胞膜进入细胞,之后被细胞内的酯酶剪切形成Fluo-3,从而被滞留在细胞内。Fluo-3游离配体几乎是非荧光性的,其荧光不会随钙离子浓度升高而增强。但是,当它与细胞内钙离子结合后可以产生较强的荧光,荧光会增加60至80倍。
Fluo-4, AM是钙指示剂Fluo-3,AM的升级版本,主要变化为后者分子上的两个氯原子被Fluo-4,AM上的氟所取代,该结构上的微小变化使Fluo-4,AM加载更快,在相同浓度下检测信号更强。
本产品为Fluo-4,AM粉末状,用于细胞内钙离子检测时,Fluo-4, AM的常用浓度为0.5-5 μM。
产品性质
CAS 号(CAS NO.) |
273221-67-3 |
分子式(Molecular Fomular) |
C51H50F2N2O23 |
分子量(Molecular Weight) |
1096.94 |
Ex/Em (nm) |
Ex/Em=494 nm/516 nm |
纯度(Purity) |
≥90% |
外观(Appearance) |
橙红色粉末 |
结构式(Structure) |
|
运输与保存方法
室温(wet ice)运输。-20℃干燥避光保存,有效期至少6个月。
注意事项
1)荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。
2)本Fluo-4,AM 容易吸潮,从冰箱取出后,请确认在干燥的环境放至室温后再开封。由于试剂极其微量,开封前请将其短暂离心,以保证粉末落入管底。
3)第一次使用时,建议母液即配即用。试剂溶解后尽可能在短时间内使用,以保证实验效果。
4)母液遇水极易分解,如果不能一次用完,建议分装保存,例如分装成5 μl/管,用封口膜封口,并用铝箔纸包裹,放在一个密闭性能好的塑料袋中,并放入一包干燥剂,在≤-20℃密封避光保存。
5)建议您在正式实验前先摸索一下细胞量、钙离子荧光探针的终浓度、培养时间等,找到最佳实验条件。
6)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
7)本产品仅作科研用途!
需要试剂准备
1. (可选)配制Pluronic F-127母液:100mg Pluronic F-127粉末中加入0.5 mL DMSO,配制成20%(w/v)的DMSO母液。溶解过程需要在40-50℃加热20-30 min。溶液室温保存,不要冷藏。如果有结晶析出,可以重新加热后溶解,不影响使用。
2. Hanksbalanced salt solution
操作方法
1)Fluo-4,AM母液的配制:向 Fluo-4, AM中加入适量DMSO,配制成1-5 mM的储存液,DMSO的加入量根据Fluo-4,AM(MW1096.94)分子量进行计算(如:若配制成1mM的母液,需向50 ug Fluo-4,AM中加入45.6 uL DMSO)。
【注】:溶解用的DMSO需要保证新鲜无水,否则将会导致 AM 体水解,使荧光染料无法进入细胞,影响实验效果。
2)Fluo-4,AM工作液的配制:利用HBSS将Fluo-4,AM稀释成1-5M的工作液,具体稀释方法如1 mM母液配制1 mL浓度为4 M工作液,用1 mL HBSS溶液稀释4 L 1 mM母液即可。
【注】:
① 推荐该探针加载浓度在4-5 M,具体的使用浓度需根据实验要求进行优化。为了避免过度加载造成细胞毒性,建议在取得有效结果的基础上尽量使用最低探针浓度。
② Fluo-4,AM工作液需现配现用,避免反复冻存。
3)(可选)如果Fluo-4进入细胞的效果不好,可向 Fluo-4, AM/DMSO 溶液中加入适量20% Pluronic F127溶液,最终稀释至其终浓度为0.04-0.05%,Pluronic F127 可以防止 Fluo-4, AM 在 HBSS中聚合并能帮助其进入细胞。
【注】:Pluronic F127可降低Fluo-4,AM的稳定性,因此只建议在配制工作液时加入,不建议将其加入储存液长期保存。
4)取出预培养的细胞,除去培养基,使用 HBSS 溶液洗涤细胞3次。
【注】:如果使用含血清的培养基,血清中的酯酶会分解 AM 体,从而降低 Fluo 4-AM 进入细胞的效果。另外含有酚红的培养基会使本底值略微偏高,所以加工作液之前需尽量去除培养基残留。
5)将 Fluo-4, AM工作液加入细胞,加入量以覆盖细胞为准。在37℃培养10-60 min,然后除去 Fluo 4-AM 工作液。
【注】:关于孵育的时间,如果首次做实验不能确定,建议先孵育30分钟,看荧光效果:如果细胞死亡较多,适当缩短时间;如果荧光强度太弱,适当延长时间。
6)用HBSS溶液洗涤细胞 3 次,以充分去除残留的 Fluo 4-AM 工作液。然后加入 HBSS 溶液覆盖细胞。
7)37℃培养箱孵育约 20-30 分钟,以确保 AM 体在细胞内的完全去酯化作用。
8)用激光共聚焦或荧光显微镜检测细胞,激发波长 494 nm,发射波长 516 nm。