价格:798
货号HRbio™ qPCR SYBR® Green Master Mix (No Rox)
产品详情
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产品信息
产品名称 |
产品编号 |
规格 |
HRbio™ qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox ) |
HRF0031 |
1 mL |
HRF0032 |
5×1 mL |
|
HRF0033 |
50×1 mL |
产品描述
HRbio™qPCR SYBR Green Master Mix(No Rox)是 2×实时定量 PCR 扩增的预混合溶液。Mix中含有热启动 HRbio™ DNA Polymerase 、SYBR Green I 、dNTPs、Mg2+ 。使用时‘’仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量 PCR ,大大简化操作过程,降低污染几率。
本品采用的 DNA 聚合酶配体可以随温度变化实时调节 DNA 聚合酶活性。配方添加了有效抑制非特异性 PCR 扩增的因 子和提升 PCR 反应扩增效率的因子,使定量 PCR 可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。
适用机型
Bio-Rad: CFX96, CFX384, iCycler iQ, iQ5, MyiQ, MiniOpticon, Opticon, Opticon 2, Chromo4;
Eppendorf: Mastercycler ep realplex, realplex 2 s;
Qiagen: Corbett Rotor-Gene Q, Rotor-Gene 3000, Rotor-Gene 6000;
Roche Applied Science: LightCycler 480, LightCycler 2.0; Lightcycler 96;
Thermo Scientific: PikoReal Cycler; Cepheid: SmartCycler; Illumina: Eco qPCR.
运输和保存方法
冰袋运输。-20℃保存,有效期18个月。
本品避免反复冻融。 产品中含有荧光染料 SYBR Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。
注意事项
1)推荐使用本公司 cDNA 合成试剂盒,以有效去除 RNA样品中残留的基因组。
2)解冻后 Master Mix 可能出现絮状物质,4℃放置并上下颠倒混匀至溶液澄清,不影响试剂性能。
3)为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
4)本产品仅作科研用途!
反应体系(推荐冰上配制)
组分 |
体积(μL) |
体积(μL) |
终浓度 |
HRbio™qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox ) |
25 |
10 |
1× |
Forward Primer (10 μM) |
1 |
0.4 |
0.2 μM |
Reverse Primer (10 μM) |
1 |
0.4 |
0.2 μM |
模板 DNA |
X |
X |
- |
无菌超纯水 |
To 50 |
To 20 |
- |
【注】: 使用前务必充分混匀, 避免剧烈震荡产生过多气泡。
a) 引物浓度:通常引物终浓度为0.2 μM,也可以根据情况在 0.1- 1.0 μM 之间进行调整。
b) 模板浓度:如模板类型为未稀释 cDNA 原液,使用体积不应超过 qPCR 反应总体积的 1/10。
c) 模板稀释:cDNA 原液建议 5- 10 倍稀释,最佳模板加入量以扩增得到的 CT 值在 20-30 个循环为好。
d) 反应体系:推荐使用20 μL 或 50 μL ,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
e) 体系配制:请于超净工作台内配制, 并使用无核酸酶残留的枪头、反应管; 推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染 和气溶胶污染。
扩增程序 (两步法)
循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
预变性 |
95℃ |
5 min |
1 |
变性 |
95℃ |
10 sec |
40 |
退火/延伸 |
60℃ |
30 sec★ |
|
熔解曲线阶段 |
仪器默认设置 1 |
扩增程序 (三步法)
循环步骤 |
温度 |
时间 |
循环数 |
预变性 |
95℃ |
5 min |
1 |
变性 |
95℃ |
10 sec |
40 |
退火 |
55-60℃ |
20 sec |
|
延伸 |
72℃ |
20 sec★ |
|
熔解曲线阶段 |
仪器默认设置 1 |
【注】高特异性可选择两步法,高效率扩增可选择三步法。
a) 预变性时间: 根据不同模板和引物的具体情况可适当缩短至 2 min。
b) 退火温度和时间:请根据引物和目的基因的长度进行调整。
c) 荧光信号采集( ★):请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置,几种常见仪器的时间设定如下:
30sec 以上: Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast;Roche Applied Science: LightCycler 480;Bio-Rad: CFX96
31sec 以上: Applied Biosystems: 7300
34sec 以上: Applied Biosystems: 7500
d) 熔解曲线: 通常情况下可以使用仪器默认程序。
结果分析
定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。
1)扩增曲线:
标准扩增曲线为 S 型。
Ct 值落在 20-30 之间时, 定量分析最准确;
Ct 值小于 10 ,需要将稀释模板后,重新进行实验;
Ct 值介于 30-35 之间时, 需要提高模板浓度,或者增大反应体系的体积,以提高扩增效率,保证结果分析的准确性;
Ct 值大于 35 时,检测结果无法定量分析基因的表达量,但可用于定性分析。
2) 熔解曲线:
熔解曲线单峰,表明反应特异性好可以进行定量结果分析;若熔解曲线出现双峰或者多峰,则不能进行定量分析。 熔解曲
线出现双峰,需要通过 DNA 琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。
如果是引物二聚体,建议降低引物浓度,或者重新设计扩增效率高的引物。
如果是非特异性扩增,请提高退火温度,或者重新设计更高特异性的引物。
引物设计指南
1.推荐引物长度25 bp 左右。扩增产物长度 150 bp 为佳,可以在 100 bp-300 bp 内选择。
2.正向引物和反向引物的 Tm 值相差不宜超过 2℃ 。引物 Tm 值 60℃-65℃为佳。
3.引物碱基分布要均匀, 避免出现连续的 4 个相同碱基, GC 含量控制在 50%左右。 3’端最后一个碱基最好为 G 或 C。
4.引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有 3 个碱基以上的互补序列。
5.引物特异性需要用 NCBI BLAST 程序进行核对。避免引物 3’端有 2 个碱基以上的非特异性互补。
6.设计完成的引物需要进行扩增效率的检测,只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。
实验案例